从哺乳动物细胞或组织分离DNA

材料与仪器：细胞、TBS抽提缓冲液、离心管

实验步骤：

步骤1：根据样品类型，从下列方法中选一个作为步骤1进行操作。

(1) 细胞样品

① 单层培养的细胞

以用冰预冷的 TBS 将单层细胞洗涤2次，用刮棒把细胞刮入约0.5ml 的 TBS 中，将细胞悬液转移到冰浴的离心管中，用1ml TBS冲洗培养皿，并入离心管中的细胞悬液。于 4℃ 以1500g离心10分钟以收获细胞。用5~10倍体积经冰预冷的 TBS 重悬细胞并再度离心。用TE ( pH 8.0）重悬细胞，使细胞密度为 5x107 细胞/ml，转移至一个三角烧瓶中（1ml 细胞悬液用 50ml 烧瓶；2ml 则用100ml烧瓶；余类推）。每毫升细胞悬液加入10ml抽提缓冲液，在37℃孵育1小时，随后进行步骤2。

抽提缓冲液：

10 mmol/L Tris-HCl，pH 8.0

0.1 mol/L EDTA，pH 8.0

20 ug/ml 胰 RNA 酶

0.5% SDS

② 悬浮生长的细胞

于 4℃ 以 1500 g 离心 10 分钟以收获细胞。用与原培养液等体积的经过冰预冷的 TBS 重悬细胞，再次离心收获细胞并重复洗涤步骤。用 pH 8.0 的 TE 重悬细胞使密度为 5x107 细胞/ml。将悬液转移至大小适当的烧瓶中，依前听述加入抽提缓冲液并孵育。

(2) 组织标本

将刚切制的组织碎块放到盛有液氮的 Waring 绞切器的不锈钢杯中，以最高速度绞切至组织粉碎成为粉末。待液氮蒸发，将组织碎末一点一点地加入到盛有近 10 倍体积抽提缓冲液（如前）的烧杯中。使粉末分散在抽提缓冲液的表面，面后振摇烧杯使粉末浸没。待其*分散于溶液中后，将该溶液转移至 50 ml 离心管中，37℃ 孵育 1 小时。随后进行步骤 2。

(3) 血液标本

收集约 20 ml 新鲜血液，加入装有 3.5 ml 酸性柠檬酸葡萄糖溶液 B ( ACD ) 的试管中 。这一抗凝剂优于 EDTA，因为它在血液贮存过程中更能保存高分子量 DNA。这些血液在制备 DNA 前可于 0℃ 保存数天或于 -70℃ 长期保存。配制 ACD 时，混合：

柠檬酸0.48g

柠檬酸钠1.32g

葡萄糖1.47g

加水至100 ml

用作抗凝剂时，每6ml新鲜血液中加入1ml ACD。

新鲜血液（20 ml）：以 1300g离心15分钟，弃上层血浆，用巴斯德吸管将淡黄层小心移到另一管中并再次离心。淡黄层即为密度不均一的白细胞宽带。将经第二次离心的淡黄层重悬于15ml抽提缓冲液中，37℃孵育1小时，随后进行步骤2。

冻藏血液（20 ml）：在室温水浴中融化，移至离心管中，用等体积 PBS 稀释；随后于室温以 3500 g离心15分钟并弃去上清液，其中含有已溶解的红细胞用15ml抽提缓冲液重悬沉淀物；37℃孵育1小时，随后进行步骤2。

步骤2：蛋白酶K至终浓度为100ug/ml，用玻棒温和地将酶混入黏稠的溶液中。

步骤3：裂解细胞的悬液置于50℃ 水浴中3小时，不时悬动该黏稠溶液。

步骤4：溶液冷却至室温，如有必要就将溶液倒入离心管。加等体积经 0.5 mol/L Tris-HCl（pH 8.0）平衡的酚，缓慢地来回颠倒离心管 10 分钟以轻轻地混合两相 。如此时两相未能混合形成乳浊液，则将离心管置于旋转器上 1 小时，于室温以 5000 g 离心 15 分钟，使两相分开。

步骤5：大口径移液管（出口直径为 0.3 cm ) 将黏稠的水相移至一洁净的离心管中并用酚重复抽提 2 次。

步骤6：分离高分子量DNA(约200kb)：第三次酚抽提后用全部水相于4℃对4L 50 mmol/L Tris-HCl ( pH 8.0)、10 mmol/L EDTA (pH8.0) 溶液透析4次，直至透析液的 OD270 值小于0.05。让透析袋留有使样品体积增至1.5~2.0倍体积的空间。下转步骤7。

分离大小为 100~150kb的 DNA：第三次酚抽提后，将全部水相移至另一离心管中并加0.2倍体积的 10mol/L 乙酸铵。在室温下加 2 倍体积乙醇并转动离心管使溶液充分混合。DNA立即形成沉淀，通常可用制成 U 形并经封口的巴斯德吸管将沉淀从乙醇溶液中移出。而大部分污染的寡聚核糖核苷酸仍留在乙醇溶液中。如果DNA沉淀成为碎片，则在吊桶式转头中于室温以 5000 g 离心 5 分钟收集 DNA。用 70% 乙醇洗涤DNA沉淀2次，并按上述条件离心收集 DNA。尽可能*地除去70%乙醇，于室温将DNA沉淀置于一个敞幵的管内，直至可见的痕量乙醇挥发殆尽。不要使DNA沉淀*干燥，否则极难溶解。

大约按每 5x106 细胞加 1ml TE (pH 8.0 )。将管子放在摇床平台上慢慢摇动直至 DNA *溶解。这通常需要12~24小时。

步骤7：测定 DNA 样品在 260 nm 和 280 nm 处的光吸收。A260 与 A280 之比应大于 1.75。低于此值则表明制备物中留有大量蛋白质。在这种情况下，应加入 SDS 至终浓度为 0.5%，并重复步骤 2~7。

步骤8： 计算 DNA 浓度，进行脉冲电场凝胶电泳或通过铺在1%琼脂糖支持层上的0.3%琼脂糖凝胶电泳分析小量样品。大于100kb的DNA，其迁移率应该比完整的噬菌体 DNA 的线性二聚体分子慢。将 DNA 贮存在4℃。